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Product details

豬瘟病毒、藍(lán)耳病病毒、口蹄疫病毒三重?zé)晒釸T-PCR 檢測(cè)試劑盒

檢測(cè)方法:熒光RT-PCR

產(chǎn)品規(guī)格:50T

保存條件:-20℃±5℃,避光保存

有效期:12個(gè)月


  • 產(chǎn)品介紹

    產(chǎn)品名稱】豬瘟病毒、藍(lán)耳病病毒、口蹄疫病毒三重?zé)晒釸T-PCR 檢測(cè)試劑盒(熒光RT-PCR法)


    【包裝規(guī)格】50T/盒


    【預(yù)期用途】

    本試劑盒適用于檢測(cè)的扁桃體、淋巴結(jié)等組織病變部與健康部交界處組織、全血等標(biāo)本中豬瘟病毒、藍(lán)耳病病毒、口蹄疫病毒RNA,適用于豬瘟病毒、藍(lán)耳病病毒、口蹄疫病毒感染的輔助診斷。


    【檢驗(yàn)原理】

    本試劑盒采用TaqMan探針法實(shí)時(shí)熒光PCR技術(shù),通過(guò)設(shè)計(jì)一對(duì)豬瘟病毒、藍(lán)耳病病毒、口蹄疫病毒特異性引物,各結(jié)合一條特異性探針,用熒光PCR技術(shù)對(duì)豬瘟病毒、藍(lán)耳病病毒、口蹄疫病毒的核酸進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測(cè),用于臨床上對(duì)可疑感染者的病原學(xué)診斷。


    【試劑組成】

    名      稱

    規(guī)      格

    酶液

    50μL×1管

    CSFV/PRRSV/FMD反應(yīng)液

    1100μL×1管

    CSFV/PRRSV/FMD陽(yáng)性質(zhì)控品

    200μL×1管

    陰性質(zhì)控品

    200μL×1管

    備注:不同批號(hào)的試劑盒組分不宜交叉使用。


    【儲(chǔ)存條件及有效期】

    -20℃±5℃,避光保存、運(yùn)輸、反復(fù)凍融≤5次,有效期12個(gè)月。


    【適用儀器】

    ABI系列 、安捷倫MX3000P/3005P、Bio-Rad等系列熒光定量PCR檢測(cè)儀。


    【標(biāo)本采集】

    病死或撲殺動(dòng)物,取分泌物、血液、脾臟、扁桃體、腎臟和淋巴結(jié)等


    【保存和運(yùn)輸】

    上述標(biāo)本短期內(nèi)可保存于-20℃,長(zhǎng)期保存可置-70℃,但不能超過(guò)6個(gè)月,標(biāo)本運(yùn)送應(yīng)采用2~8℃冰袋運(yùn)輸,嚴(yán)禁反復(fù)凍融。


    【使用方法】

    1. 樣品處理(樣本處理區(qū))

    1.1樣本前處理

    組織樣品:每份組織分別從3個(gè)不同的位置稱取樣品約1g,手術(shù)剪剪碎混勻后取0.5g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至1.5mL滅菌離心管中,8000rpm離心2min,取上清液100μL于1.5mL滅菌離心管中;全血樣本:待血凝固后,取血清100μL于1.5mL滅菌離心管中。

    1.2核酸提取

    按照相應(yīng)RNA核酸提取試劑盒進(jìn)行核酸提取,核酸提取產(chǎn)物-20℃保存。

    2. 試劑配制(試劑準(zhǔn)備區(qū))

    根據(jù)待檢測(cè)樣本總數(shù),設(shè)所需要的PCR反應(yīng)管管數(shù)為N(N=樣本數(shù)+1管陰性對(duì)照+1管陽(yáng)性對(duì)照,每個(gè)測(cè)試反應(yīng)體系配制如下表: 

    試劑

    CSFV/PRRSV/FMD反應(yīng)液

    酶液

    用量(樣本數(shù)為N)

    19μL

    1μL

    3. 加樣(樣本處理區(qū))

    將步驟1提取的RNA、陽(yáng)性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取5μL,分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

    4. PCR擴(kuò)增(核酸擴(kuò)增區(qū))

    4.1 將待檢測(cè)反應(yīng)管置于熒光定量PCR儀反應(yīng)槽內(nèi);

    4.2 設(shè)置好通道、樣品信息,反應(yīng)體系設(shè)置為25μL;

    熒光通道選擇: 檢測(cè)通道:CSFV選擇FAM、PRRSV選擇HEX,F(xiàn)MD選擇CY5,淬滅通道選擇NONE,參比熒光選NONE。

    4.3 推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置:

    步驟

    循環(huán)數(shù)

    溫度

    時(shí)間

    收集熒光信號(hào)

    1

    1 cycle

    50℃

    15min

    2

    1 cycle

    95℃

    3min

    3

    40 cycles

    94℃

    15sec

    55℃

    30sec

    5. 結(jié)果分析判定

    5.1結(jié)果分析條件設(shè)定

    5.2設(shè)置Baseline和Threshold:一般直接按機(jī)器自動(dòng)分析的結(jié)果分析,當(dāng)曲線出現(xiàn)整體傾斜時(shí),根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié)Baseline的start值(一般可在3~15范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop值(一般可在5~20范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及Threshold的Value值(上下拖動(dòng)閾值線至高于陰性對(duì)照),重新分析結(jié)果。

    5.3結(jié)果判斷

    陽(yáng)性:檢測(cè)通道Ct值≤35.0,且曲線有明顯的指數(shù)增長(zhǎng)曲線。

    可疑:檢測(cè)通道Ct值>35.0,且出現(xiàn)典型擴(kuò)增曲線的樣本建議重復(fù)試驗(yàn),重復(fù)試驗(yàn)結(jié)果出現(xiàn)Ct值≤35.0和典型擴(kuò)增曲線者為陽(yáng)性,否則為陰性。

    陰性:樣本檢測(cè)結(jié)果無(wú)Ct值且無(wú)明顯的擴(kuò)增曲線。

    6. 質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)

    陰性質(zhì)控品:無(wú)明顯擴(kuò)增曲線或無(wú)Ct值顯示;

    陽(yáng)性質(zhì)控品:擴(kuò)增曲線有明顯指數(shù)生長(zhǎng)期,且Ct值≤30;

    以上條件應(yīng)同時(shí)滿足,否則實(shí)驗(yàn)視為無(wú)效。

    7. 檢測(cè)方法的局限性

    ? 樣本檢測(cè)結(jié)果與樣本收集、處理、運(yùn)送以及保存質(zhì)量有關(guān);

    ? 樣本提取過(guò)程中沒有控制好交叉污染,會(huì)出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果;

    ? 陽(yáng)性對(duì)照、擴(kuò)增產(chǎn)物泄漏,會(huì)導(dǎo)致假陽(yáng)性結(jié)果;

    ? 病原體在流行過(guò)程中基因突變、重組,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

    ? 不同的提取方法存在提取效率差異,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

    ? 試劑運(yùn)輸,保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測(cè)效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測(cè)不準(zhǔn)確的結(jié)果;

    ? 本檢測(cè)結(jié)果僅供參考,如須確診請(qǐng)結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測(cè)手段。


    【注意事項(xiàng)】

    ? 所有操作嚴(yán)格按照說(shuō)明書進(jìn)行;

    ? 試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化,完全混勻并短暫離心;

    ? 反應(yīng)液應(yīng)避光保存;

    ? 反應(yīng)中管蓋需蓋緊;

    ? 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服;

    ? 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進(jìn)行,以免交叉污染;

    ? 實(shí)驗(yàn)完畢后用10%次氯酸或75%酒精或紫外燈處理工作臺(tái)和移液器;

    ? 試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對(duì)待,并按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。


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